
为什么CRISPR Screen实验前要先做文库质检?

sgRNA文库是CRISPR筛选的“武器库”,其质量直接决定实验成败。文库质检的核心是验证两个关键指标:覆盖度(sgRNA是否覆盖了所有目标基因)和均一性(各sgRNA的丰度是否均衡)。
通过NGS对原始质粒文库进行深度测序,可以评估是否存在偏好在扩增过程中被过度富集或丢失的sgRNA序列。如果文库均一性差(即部分sgRNA占比过高,另一些几乎检测不到),那么在筛选前就已经存在“偏科”,后续的富集分析将失去可靠性。
简言之,不做文库质检的CRISPR Screen,结果只能是漏洞百出。
筛选后的NGS测序,深度要达到多少才够?
测序深度是CRISPR Screen数据质量的另一个决定因素。一般建议每个样本的测序深度至少达到文库规模的300倍以上。
例如,一个靶向20000个基因、每个基因设计6条sgRNA的文库(总计12万条sgRNA),每个样本的测序数据量应保证每条sgRNA平均被读到300次以上,即总reads数不低于3600万条。
如果测序深度不足,低丰度的sgRNA可能因随机取样而丢失,导致假阴性;但深度并非越高越好,过高的深度会带来不必要的成本。理想的测序深度应在保证数据饱和的前提下,兼顾成本效益——通常以sgRNA丰度分布曲线趋于平缓为判断标准。
正筛选和负筛选在数据分析上有什么区别?
正筛选:细胞在筛选压力下存活并富集。例如在药物处理组中,携带特定sgRNA的细胞因获得耐药性而扩增,对应的sgRNA丰度上升。分析时关注的是显著富集的sgRNA或基因,常用RRA评分(评分越低、排名越靠前,表示该基因越可能是靶基因)。
负筛选:敲除必需基因的细胞在筛选中死亡被淘汰,对应的sgRNA丰度下降。分析时关注的是显著耗竭的sgRNA或基因。
两种筛选的数据分析策略不同:正筛选要关注“谁涨了”,负筛选要关注“谁跌了”。在实验设计阶段就要明确筛选方向,以便后续选择合适的统计模型。
双质粒系统和单质粒系统在NGS分析时有区别吗?
双质粒系统:将sgRNA和Cas9分别装载在两个不同的质粒上,先后转导细胞(先导入Cas9稳转株,再导入sgRNA文库);常用lentiGuide-Puro载体;
单质粒系统:将sgRNA和Cas9整合在同一质粒中,一步转导即可;常用lentiCRISPR v2载体。

两者的NGS分析逻辑是相同的:都是通过PCR扩增sgRNA区域,深度测序,比较筛选前后各sgRNA的丰度变化。
区别在于实验设计和操作:双质粒系统需要先筛选Cas9稳转株,周期更长但灵活性更高;单质粒系统操作更简便、整合更稳定。
我们在提供NGS服务时,借助质粒图谱以设计合适的PCR引物和确定sgRNA骨架序列。无论哪种系统,只要提供完整的载体信息,分析流程都是标准化的。
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